Efecto de la yema de huevo de Coturnix japonica (codorniz) en ratones inducidos a daño por etanol.

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.12873/434gallo

Palabras clave:

Tejido nervioso, Yema de huevo, Glutatión, Proteína, Ratones, Codorniz

Resumen

Introducción: La alta prevalencia de enfermedades neurodegenerativas en la población adulto mayor requiere de investigación enfocada a alimentos funcionales con propiedades reguladoras sobre el estado rédox y con potencial antioxidante. La yema de huevo de codorniz es un alimento con una gran diversidad de compuestos antioxidante con actividad neuroprotectora. Objetivo: Evaluar el efecto de la administración de yema de huevo Coturnix japonica (codorniz) sobre el tejido nervioso inducido a daño por etanol en ratones. Metodología: Se empleó 35 ratones, los cuales recibieron el siguiente tratamiento vía orogástrica durante cinco días: grupos I y II agua (10 mL/kg, grupo III yema (5 mL/kg), grupo IV yema (10 mL/kg) y grupo V yema (15 mL/kg). Al quinto día se administró etanol al 99% vía subcutánea (5g/kg) a los grupos II-V, luego de cuatro horas los ratones fueron decapitados para obtener el cerebro y cerebelo y posteriormente ejecutar las pruebas bioquímicas y el análisis histopatológico. Resultados:  El grupo IV presentó fenómeno de proliferación neuronal y pluriestratificación de Células de Purkinje en cerebro y cerebelo respectivamente, adicionalmente presentó una mejor relación GSH/GSSG (p<0.05) respecto al grupo II, no hubo diferencia estadísticamente significativa entre los niveles de proteína ni de grupos sulfhidrilo proteico en ninguno de los grupos. Conclusiones: La administración de yema de huevo de Coturnix japónica produjo una mejor conservación de la citoarquitectura del cerebro y cerebelo, así como un aumento del perfil de GSH.

Biografía del autor/a

Mariano GALLO RUELAS, Red Asistencial Piura, EsSalud, Piura, Perú

Mariano Gallo Ruelas. Licenciado en Nutrición, investigador RENACYT con interés en la síntesis sistemática de evidencia en Nutrición clínica y generación de estudios en Nutrición experimental.

Oscar Gustavo HUAMÁN-GUTIERREZ, Instituto de Investigación en Bioquímica y Nutrición, Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima, Perú

Licenciado en Nutrición, Magister en Bioquímica. Egresado del Doctorado en Ciencia de la Salud. Ha realizado Docencia universitaria desde 2002 en la Facultad de Medicina de la UNMSM a nivel de pregrado y posgrado.. Investigador registrado en Renacyt en el área de Plantas Medicinales y alimentos funcionales. Asesor de de tesis a nivel de pregrado y posgrado. Ha publicado en revista Indexada.

Citas

JPND - Research. What is neurodegenerative disease? [Internet]. [cited 2022 May 3]; Available in: https://www.neurodegenerationresearch.eu/what/

Emmady PD, Schoo C, Tadi P. Major Neurocognitive Disorder (Dementia). StatPearls [Internet] 2022 [cited 2023 May 7]; Available in: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK557444/

Li X, Feng X, Sun X, Hou N, Han F, Liu Y. Global, regional, and national burden of Alzheimer’s disease and other dementias, 1990–2019. Front Aging Neurosci 2022;14:1120. DOI: 10.3389/FNAGI.2022.937486/BIBTEX

Blouin C, Tirado E, Mamani F. La situación de la población adulta mayor en el Perú: Camino a una nueva política. 2018. Available in: https://cdn01.pucp.education/idehpucp/wp-content/uploads/2018/11/23160106/publicacion-virtual-pam.pdf

INEI. Estado de la población peruana 2020 [Internet]. Instituto Nacional de Estadística e Informática ; 2021 [cited 2023 May 7]. Available in: https://www.inei.gob.pe/media/MenuRecursivo/publicaciones_digitales/Est/Lib1743/Libro.pdf

Carvalho JCT, Fernandes CP, Daleprane JB, Alves MS, Stien D, Dhammika Nanayakkara NP. Role of natural antioxidants from functional foods in neurodegenerative and metabolic disorders. Oxid Med Cell Longev 2018;2018:2–4. DOI: 10.1155/2018/1459753

Shieh P, Hsu SS, Liang WZ. Mechanisms underlying protective effects of vitamin E against mycotoxin deoxynivalenol-induced oxidative stress and its related cytotoxicity in primary human brain endothelial cells. Environ Toxicol 2021;36(7):1375–88. DOI: 10.1002/tox.23133

Tunsaringkarn T, Tungjaroenchai W, Siriwong W. Nutrient benefits of quail (Coturnix coturnix japonica) eggs. International Journal of Scientific and Research Publications 2013;3(5):1–8. Available in: https://www.ijsrp.org/research-paper-0513/ijsrp-p1729.pdf

Oladipo GO, Ibukun EO. BioActivities of Coturnix japonica (quail) egg yolk and albumen against physiological stress. Food Sci Nutr 2017;5(2):334–43. DOI: 10.1002/fsn3.397

Oladipo GO, Oladipo MC, Ibukun EO, Salawu SO. Quail (Coturnix japonica) egg attenuated 2-butoxyethanol-induced enzymatic dysregulation, disseminated thrombosis and hemolytic impairment in female wistar rats. J Ethnopharmacol [Internet] 2020;113508. Available in: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/33169693 DOI: 10.1016/j.jep.2020.113508

Hernández-Sampieri, R. & Mendoza, C (2018). Metodología de la investigación. Las rutas cuantitativa, cualitativa y mixta, Ciudad de México, México: Editorial Mc Graw Hill Education, Año de edición: 2018, ISBN: 978-1-4562-6096-5, 714 p.

Ali T, Rehman SU, Shah FA, Kim MO. Acute dose of melatonin via Nrf2 dependently prevents acute ethanol-induced neurotoxicity in the developing rodent brain. J Neuroinflammation 2018;15(1):1–19. DOI: 10.1186/s12974-018-1157-x

Gartner LP. Texto de histología - 4th Edition [Internet]. 2017 [cited 2020 Nov 24];150–71. Available in: https://www.elsevier.com/books/texto-de-histologia/gartner/978-84-9113-118-2

Sedlak J, Lindsay RH. Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Anal Biochem 1968;25:192–205. DOI: https://doi.org/10.1016/0003-2697(68)90092-4

Ellman GL. Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys 1959;82(1):70–7. DOI: https://doi.org/10.1016/0003-9861(59)90090-6

Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L., and Randall RJ. Protein Measurement with the Folin Phenol Reagent. J Biol Chem 1951;193:265–275. Available in: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14907713/

Silvia Suárez Cunza. Actividad captadora de radicales libres y efecto antioxidante de metabolitos secundarios del extracto acuoso de Allium Sativum variedad Huaralino [Internet]. Tesis doctoral2014;Materiales. Available in: https://cybertesis.unmsm.edu.pe/bitstream/handle/20.500.12672/3963/Suarez_cs%282%29.pdf?sequence=1&isAllowed=y

Congreso de la República. Ley de protección y bienestar animal N° 30407 [Internet]. El Peruano 2016 [cited 2023 May 7]; Available in: https://busquedas.elperuano.pe/normaslegales/ley-de-proteccion-y-bienestar-animal-ley-n-30407-1331474-1/

Feltham BA, Louis XL, Eskin MNA, Suh M. Docosahexaenoic Acid: Outlining the Therapeutic Nutrient Potential to Combat the Prenatal Alcohol-Induced Insults on Brain Development. Advances in Nutrition 2020;11(3):724–35. DOI: 10.1093/ADVANCES/NMZ135

Evbuomwan SA, Omotosho OE, Mgbojikwe I. Roles and Mechanisms of Docosahexaenoic Acid (DHA) in Neurodevelopment, Neuronal Functions, Learning and Memory. 2022; Available in: http://psjd.icm.edu.pl/psjd/element/bwmeta1.element.psjd-945ecc8d-00df-4861-ade0-bea10f1a5df7

Ramírez D, Saba J, Turati J, Carniglia L, Imsen M, Mohn C, et al. NDP-MSH reduces oxidative damage induced by palmitic acid in primary astrocytes. J Neuroendocrinol 2019;31(2). DOI: 10.1111/jne.12673

Qin L, Crews FT. NADPH oxidase and reactive oxygen species contribute to alcohol-induced microglial activation and neurodegeneration [Internet]. 2012. Available in: http://www.jneuroinflammation.com/content/9/1/5

Gęgotek A, Skrzydlewska E. Antioxidative and Anti-Inflammatory Activity of Ascorbic Acid. Antioxidants 2022, Vol 11, Page 1993 [Internet] 2022 [cited 2023 May 7];11(10):1993. Available in: https://www.mdpi.com/2076-3921/11/10/1993/htm DOI: 10.3390/ANTIOX11101993

Iskusnykh IY, Zakharova AA, Pathak D. Glutathione in Brain Disorders and Aging. Molecules [Internet] 2022 [cited 2023 May 7];27(1). Available in: https://www.mdpi.com/1420-3049/27/1/324 DOI: 10.3390/molecules27010324

Ogata FT, Branco V, Vale FF, Coppo L. Glutaredoxin: Discovery, redox defense and much more. Redox Biol [Internet] 2021;43(November 2020):101975. DOI: 10.1016/j.redox.2021.101975

Hu Y, Zhang X, Lian F, Yang J, Xu X. Combination of Lutein and DHA Alleviate H 2 O 2 Induced Cytotoxicity in PC12 Cells by Regulating the MAPK Pathway. 2021. Available in: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34470998/ DOI: 10.3177/jnsv.67.234

Gunal MY, Sakul AA, Caglayan AB, Erten F, Kursun OED, Kilic E, et al. Protective Effect of Lutein/Zeaxanthin Isomers in Traumatic Brain Injury in Mice. Neurotox Res 2021;39(5):1543–50. DOI: 10.1007/s12640-021-00385-3

Liu ZH, Chen NY, Tu PH, Wu C Te, Chiu SC, Huang YC, et al. DHA Attenuates Cerebral Edema Following Traumatic Brain Injury via the Reduction in Blood–Brain Barrier Permeability. International Journal of Molecular Sciences 2020, Vol 21, Page 6291 [Internet] 2020 [cited 2023 May 7];21(17):6291. Available in: https://www.mdpi.com/1422-0067/21/17/6291/htm DOI: 10.3390/IJMS21176291

Descargas

Publicado

02-10-2023

Cómo citar

GALLO RUELAS, M., & HUAMÁN-GUTIERREZ, O. G. (2023). Efecto de la yema de huevo de Coturnix japonica (codorniz) en ratones inducidos a daño por etanol. Nutrición Clínica Y Dietética Hospitalaria, 43(4). https://doi.org/10.12873/434gallo

Número

Sección

Artículos originales

Categorías

Artículos más leídos del mismo autor/a