Efecto del zumo del fruto Solanum quitoense (lulo) sobre el daño cerebral y cognitivo inducido por cloruro de mercurio en ratones
DOI:
https://doi.org/10.12873/441puellesKeywords:
neuroprotección, solanum quitoense, cloruro de mercurio, función cognitiva, alimento funcionalAbstract
Introduction: Neurodegenerative diseases have been increasing in recent decades, with dementia being the main pathology with the greatest impact globally. Objective: To evaluate the neuroprotective effect of Solanum quitoense (lulo) fruit juice against the toxicity of mercury (II) chloride in mice. Materials and methods: Experimental design, with control group and post-test. 42 male mice were used. To induce toxicity, a solution of HgCl2 (10 mg/kg) was used via the orogastric route for a period of seven days. During this period, they received the following treatments: groups I and II physiological saline; groups III vitamin E (40IU/kg); group IV-V-VI lulo juice, 0.5; 2.0 and 8.0 mL/kg, respectively. Once the treatment was completed, the animals were sacrificed by decapitation, the brain and cerebellum were removed from the cranial cavity. The left hemisphere was homogenized for the determination of lipoperoxidation, glutathione (reduced and total), superoxide dismutase and catalase activity. The right hemisphere and cerebellum were preserved for histological evaluation. Cognitive function (learning and memory) was evaluated according to the Deacon and Rawlis protocol. Results: The administration of lulo juice decreased brain indices in groups V-VI. Lipoperoxidation decreased (groups IV-VI), the GSH/GSSG ratio increased (groups V-VI). Catalase activity increased (groups IV-VI). The SOD/CAT ratio decreased (groups IV-VI). The latency time and number of attempts were lower in groups IV-VI. Conclusions: The administration of Solanum quitoense fruit juice has a neuroprotective effect for the model studied. Keywords: neuroprotection, Solanum quitoense, mercuric chloride, cognitive function, functional food (source: MeSH NLM).
References
Martínez, D. B., Soldevilla, M. G., Santiago, A. P., & Martínez, J. T. Enfermedad de alzheimer. Medicine-Programa de Formación Médica Continuada Acreditado. (2019); 12(74), 4338-4346.
www.who.int/es [Internet]. Suiza: Organización Mundial de la Salud; 1948 [actualizado 12 diciembre 2017; consultado 23 agosto 2018].
Patterson, C. World Alzheimer Report 2018: the state of the art of dementia research: new frontiers. Alzheimer’s Disease International (ADI): London, UK. (2018).
ALZHEIMER’S ASSOCIATION. Alzheimer’s Disease Facts and Figures. 2020.
Soares, N. M., Pereira, G. M., Figueiredo, R. I. D. N., Soares, N. M., Almeida, R. M. M. D., & Portela, A. D. S. Impacto econômico e prevalência da doença de Alzheimer em uma capital Brasileira. Ciência & Saúde. Porto Alegre: PUCRS, 2008. (jul./set 2017). Vol. 10, n. 3, p. 133-138.
Paumi CM, Ledford BG, Smitherman PK, Townsend AJ, Morrow CS. Role of multidrug resistance protein 1 (MRP1) and glutathione-S-transferase A1-1 in alkylating agent resistance. Kinetics of glutathione conjugate formation and efflux govern differential cellular sensitivity to chlorambucil versus memphalan toxicity. J Biol Chem 2001;276:7952-6.
Lara, H. H., Alanís-Garza, E. J., Puente, M. F. E., Mureyko, L. L., Torres, D. A. A., & Turrent, L. I. Nutrición que previene el estrés oxidativo causante del Alzheimer. Prevención del Alzheimer. Gac Med Mex. (2015); 151, 245-51.
SICA. Instituto Nacional de Estadísticas y Censos, Ministerio de Agricultura y Ganadería, Servicio de Información Agropecuaria Indicadores económicos del Ecuador. (2006).
Cerón, I., Higuita, J., & Cardona, C. Capacidad antioxidante y contenido fenólico total de tres frutas cultivadas en la región andina. Vector. (2010); 5(2011), 5.
Moreno Guerrero C, Andrade Cuvi M, Concellón A, Díaz Navarrete G. ESTUDIO DE LA CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DURANTE EL ALMACENAMIENTOREFRIGERADO DE NARANJILLA (Solanum quitoense) TRATADA CONRADIACIÓN UV-C. Red de Revistas Científicas de América Latina y el Caribe, España y Portugal. 2013; 14(2):125-132.
Glaser, V. Effects of inorganic selenium administration in methylmercury- induced neurotoxicity in mouse cerebral cortex. International Journal of Developmental Neurosciencia. 2010; 28: 631-637.
Suárez S. Detoxificación hepática y defensa antioxidante por efecto de xenobioticos alimentarios. Universidad Nacional Mayor de San Marcos; 1995.
Seldlak J, Lindsay H. Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman’s reagent. Anal Biochem. 1968;205:192–205.
Marklund S. and Marklund G. Involvement of the Superoxide Anion Radical in the Autoxidation of Pyrogallol and Convenient Assay for Superoside Dismutase, Eur J Biochem. 1974; 47: 469-474.
Aebi H. Catalase in Vitro. Methods in Enzymology. 1947; 105: 121-126.
Deacon R and Rawlins P. T-maze alternation in the rodent. Nature Protocols. 2006; 1(1): 7-12.
Vega, S., & Watanabe, R. Análisis de la Ley 30407 «Ley de Protección y Bienestar Animal» en el Perú. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú. 2016; 27(2), 388-396.
Flechas, H., Sánchez, L., & Silva, J. Tamizaje Fitoquímico y Cálculo de Rendimiento de Sapogeninas Esteroidales de Tres Procedencias de Solanum Quitoense Var. Septentrionale" Naranjillo". Colombia forestal. (2008); 11(1), 201-214.
Konigsberg Fainstein M. Radicales libres y estrés oxidativo, Aplicaciones médicas. Mártinez Moreno M, editor. 2008.
Maestro-Durán, R. y Borja Padilla, R. Actividad antioxidante de las vitaminas C y E y de la provitamina A. Grasas y aceites. (1993).
Vázquez-Flores, A. A., Álvarez-Parrilla, E. M. I. L. I. O., López-Díaz, J. A., Wall-Medrano, A., & De la Rosa, L. A. Taninos hidrolizables y condensados: naturaleza química, ventajas y desventajas de su consumo. Tecnociencia Chihuahua. (2012); 6(2), 84-93.
Abraham, W. M., González-Aguilar, G. A., López-Díaz, J. A., Álvarez-Parrilla, E., Rosa, L. A., & Ramos-Jimenez, A. Taninos hidrolizables; bioquímica, aspectos nutricionales y analíticos y efectos en la salud. Producto de investigación. (2015).
Waitzberg, D. L., & Garla, P. Contribución de los ácidos grasos Omega-3 para la memoria y la función cognitiva. Nutrición Hospitalaria. (2014); 30(3), 467-477.
Zhang, ZG, Wu, L., Wang, JL, Yang, JD, Zhang, J., Zhang, J., ... & Gao, GD. El astragalosido IV previene la muerte celular SH-SY5Y inducida por MPP + mediante la inhibición de las vías mediadas por Bax y la producción de ROS. Bioquímica molecular y celular. (2012); 364 (1-2), 209-216.
Instituto Nacional de Nutrición (Colombia). Tabla de composición de alimentos colombianos. (1967).
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